CTAB法提取NDA的优势

多放一点液氮,磨得时间适当长一些.如果你的样品比较多,在液氮还没有蒸发前迅速把粉末转移到EP官管中,然后把它暂时放到－20的冰箱中,等所有的样品全部磨好后统一加CTAB.你做实验的时候材料最好尽量新鲜

CTAB法原理CTAB(hexadecyltrimethylammoniumbromide,十六烷基三甲基溴化铵),是一种阳离子去污剂,具有从低离子强度溶液中沉淀核酸与酸性多聚糖的特性.在高离子强度的

1）取材料,加液氮研磨成粉末状,迅速移入1.5mlEppendorf管中；（2）加入800μl的CTAB提取缓冲液,混匀（CTAB在65℃水浴预热）,每5min轻轻震荡几次,20min后12000r/

（1）取材料,加液氮研磨成粉末状,迅速移入1.5mlEppendorf管中；（2）加入800μl的CTAB提取缓冲液,混匀（CTAB在65℃水浴预热）,每5min轻轻震荡几次,20min后12000r

前面的步骤没有操作好,要么是你的样品比较特殊,含有较多的色素或脂肪,先用电泳检测一下,如果条带清楚就可以用,如果混乱要修改实验设计.不知道你提的是动物还是植物的DNA,估计可能是植物色素或者是叶片的蜡

液氮只是为了便于破碎植物组织,没有也一样能提取DNA,毕竟加CTAB后还要65度水浴,分解得厉害的话就减少振荡,或增大CTAB用量,使DNA尽可能多地浸取出来.再问：那研磨的时候为了是它充分的研磨是要

你上样量是多少?可能是你提的DNA浓度低了,

你在沉时加入1/2V的5MNacl和2V的无水乙醇,主要是高浓度盐离子可以使多糖悬浮在溶液中,无水乙醇可以减少杂质离子的沉淀,试试吧,我一直这么做,效果还可以吧再问：哦，非常感谢！我一直都是用1/10

一般氯仿异戊醇都是室温就可以了,你提取的什么组织呢?再问：我取的是丁香叶片有点老现在提取不出来怎么办？提取出来的都是跟果冻似的东西，有极少有白色絮状沉淀，但是跑电泳根本没有东西，有絮状的电泳显示是RN

CTAB法原理CTAB(hexadecyltrimethylammoniumbromide,十六烷基三甲基溴化铵),是一种阳离子去污剂,具有从低离子强度溶液中沉淀核酸与酸性多聚糖的特性.在高离子强度的

（1）可以的,液氮冷冻更容易破碎细胞壁释放DNA,但是不冷冻也没关系的,提取的DNA量即使少点也足够满足试验要求.（2）-20度足够保存,用一年以上都没问题,超低温保存时间当然更长,但是切忌反复冻融,

呃……能说下具体的改动部分吗?一般来说,改良法是应用于多年生植物组织的DNA提取,含有较多的酚,多糖,硅质等,棉花和水稻的DNA提取也需要一定的修改.思路有两个,一方面尽量去除杂质、蛋白和脂类,另一方

下游做PCR的话,应该保证模板的纯度,CTAB法提取多半会得到浓度不错但纯度不够的DNA,建议将得到的DNA进行纯化,或者直接使用试剂盒提取,现在的国产试剂盒都还不错的,节约时间又不贵

核酸电泳时使用的是EB染料吗?如果提取的样品中还有较多的RNA,RNA分子量较小,电泳时跑在前面,会结合较多的EB,影响DNA的观察,建议RNA酶37度消化30分钟.再问：用的goldview。再答：

加入LiCl这一步.氯化锂可以选择性沉淀RNA.

蓝色

因为琼脂糖凝胶只能分辨20kb以下的线性DNA,超过20kb的线性DNA都只会和20kb的线性DNA拥有一样的迁移速率.而基因组DNA一般都远远大于这个数,所以一般情况下所有的DNA都只会聚集于一条带

看你的DNA用来干嘛了,如果要求不高可以不加再问：做普通PCR，我知道能提出DNA几乎就可以了，只是我想弄明白加BI这一步的作用，有劳赐教，谢谢。再答：你的bi全称是什么？

是叶片嘛~总会有许多色素的~每次提的状况也不一样~还有老叶子的话色素蛋白会更多~用嫩的吧~

我用过CTAB法提取植物叶片DNA,会得到叶片中所有的DNA,总DNA里当然包括叶绿体和线粒体DNA,使用这种模板可以进行叶绿体和线粒体基因组上的扩增,我以前做过TRNL_F这个基因的扩增,用的就是C