多大浓度的质粒可以做转化

解题思路：醋酸是弱电解质，在水溶液中只有部分电离，所以醋酸的浓度大于氢离子浓度；两种醋酸溶液的物质的量浓度分别为c1和c2，pH分别为a和a+1的两种醋酸溶液中氢离子浓度之比=10：1，当两种酸的电离

质粒

怎么不反应呢?实验室中装浓氢氧化钠的瓶子不是要用胶塞,而不用玻璃塞?它与金属铝和锌、非金属硼和硅等反应放出氢.参考http://baike.baidu.com/view/2199413.html?wt

跑电泳啊,如果有多条条带说明东西不纯.在保证纯度的情况之下测OD值,再转换成质量,似乎是1OD等于33.8ug?然后根据质粒的大小,计算质粒的分子量.把质量除以分子量,就得到摩尔数了.

不管酶切还是PCR,都是间接的结果.要确定克隆的正确,一定要测序的啊.你测个序,问题就迎刃而解了.到底是什么问题也就清楚了.再问：我前些天去遇到一样的问题，酶切鉴定正确，但测序后什么也不是呢再答：所以

1、“切开的质粒”等于“线性DNA”.2、“线性DNA转化细菌、以及真菌的原生质体”已经成功.所以,切开的质粒能转化进入感受态细菌.但是,不能复制.如果质粒上带有与细菌染色体上同源序列,质粒可以重组交

好像和试剂盒没多大关系把,只能说菌没摇好,重新准备摇大瓶把,当然如果你认为是试剂盒的问题那么可以换好点的,比如axygen,或者其他更好的

我有个室友前段时间也遇到了这种情况再答：后面找重庆威斯腾生物公司做的慢病毒，慢病毒感染后细胞死亡率低多了，效果还可以。

一般的酵母质粒转染是用环状形式来进行的,像酵母双杂交之类的.如果用线性化质粒一般都是为了在酵母中表达蛋白,转入的质粒会整合到基因组上的,仍然是线性.

培养之后,根据质粒上的筛选标记,才能知道是否发生了转化.或者是为了让质粒在细菌中大量复制.

首先看你是否使用蓝白斑筛选,如果使用了白色菌落就行了,但是x-gal比较贵,所以很多实验室都不用,而用菌落PCR.首先配制clonebuffer,每400微升含EXtaqbuffer40微升,Mgcl

不是不限,而是没法说.问题就在于带有抗性基因的质粒能否在宿主中稳定存在以及有效表达和遗传.这就关系到质粒本身的性质和宿主菌的情况.质粒种类很多,宿主菌的类别更多了,不仅仅和菌的种类有关,同一种菌的不同

定量的

问题描述不清.“同时做对照：质粒酶切回收的产物电转”?也就是说拿线性的质粒去电转做对照?如果是这样,你不如用感受态细胞直接做阴性对照,再用原质粒转化做阳性对照,这样更好分析结果.多克隆位点是很小一段,

如果是普通分光光度计,那就需要一个试剂盒,不过我不知道质粒应该用什么样的,可以去生物公司销售人员问一下.具体操作步骤：1、按照试剂盒说明书配出待测液.2、常规分光光度计使用方法,很多人都会.主要步骤包

woke2008(站内联系TA)如果是无抗的LB液体培养基的话,不长就是操作问题或培养基问题（无抗的不小心都会污染的,何况还接了菌）；如果是有抗性的话,那是因为你的平板上的单克隆是杂菌,转到抗性液体培

southern是检测你的目的基因是否转入受体即你的转基因植物中,在插入了目的基因的表达载体中应该可以检出你的目的基因,但这并不意味着你的目的基因就一定会成功的转入植物中.不知你转的是什么植物,如果你

理论计算是0.07mol/L.但是,AgCl在这个浓度下能不能溶解,还要有溶解度数值才行.

“单酶切可以切开,而且质粒的大小明显小于空质粒”,首先你的表达有误,单酶切可以切开,说明目的基因有连接上,那么重组载体该是比空载大的.质粒稀释100倍后PCR,有目的条带,也说明了是阳性克隆.有拖带,

影响转化效率的因素很多,主要有：感受态细胞制备的质量、受体菌生长期（大肠杆菌在对数生长期易产生感受态）、质粒的大小和构型、所用试剂的纯度、接种前菌种的保藏方式、冰浴时间（延长冰浴时间可略微提高转化率）